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質(zhì)粒構(gòu)建的方法有哪些?

 更新時(shí)間:2024-01-04    點(diǎn)擊量:1087

    細(xì)菌質(zhì)粒是DNA重組技術(shù)中常用的載體。通過基因工程手段將需要的外源基因送進(jìn)受體細(xì)胞中去進(jìn)行增殖和表達(dá)。將某種目標(biāo)基因片段重組到質(zhì)粒中,構(gòu)成重組基因或重組體。然后將這種重組體經(jīng)微生物學(xué)的轉(zhuǎn)化技術(shù),轉(zhuǎn)入受體細(xì)胞(如大腸桿菌)中,使重組體中的目標(biāo)基因在受體菌中得以繁殖或表達(dá),從而改變寄主細(xì)胞原有的性狀或產(chǎn)生新的物質(zhì)。那么你知道質(zhì)粒構(gòu)建的方法有哪些嗎?讓我們一起來看看吧!

一、酶切連接

傳統(tǒng)意義上,質(zhì)粒重組是基于堿基互補(bǔ)配對(duì)的原理,一般做法為:

1)通過引物在目的片段兩端引入酶切位點(diǎn);

2)用相同的限制性內(nèi)切酶分別對(duì)目的片段和載體進(jìn)行酶切處理;

3)目的片段和載體的酶切產(chǎn)物在體外連接;

4)連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌;

5)篩選重組子。

在實(shí)驗(yàn)中,我們的每一步都需要根據(jù)該目的基因與載體的特性調(diào)整實(shí)驗(yàn);考慮到后續(xù)實(shí)驗(yàn),在選擇載體時(shí)務(wù)必要滿足與宿主細(xì)胞兼容且容易檢出的條件;

二、Gateway技術(shù)

    高通量基因克隆技術(shù)(Gateway Cloning Technology),是由Invitrogen公司在二十世紀(jì)九十年代末發(fā)明并應(yīng)用于分子生物學(xué)基因克隆的一項(xiàng)zhuan利技術(shù)。它利用專有的重組序列使得DNA片段能夠更有效地被轉(zhuǎn)入質(zhì)粒當(dāng)中,可應(yīng)用于大片段的基因克隆,并且在保持正確閱讀框的前提下讓不同表達(dá)載體間的DNA轉(zhuǎn)移成為可能。

    這一技術(shù)在插入的目的DNA片段兩端整合att L1和att L2兩個(gè)側(cè)端重組序列(Flanking Recombination Sequence),來構(gòu)建一個(gè)類似通道的結(jié)構(gòu)并稱之為“入門克隆"(Gateway Entry Clone),可以避免目的片段內(nèi)存在切點(diǎn)的問題而使得大片段DNA保持其完整性,大大提高了克隆效率,常應(yīng)用于大規(guī)模的DNA片段整合進(jìn)同一種表達(dá)載體,因此稱之為高通量基因克隆技術(shù)。

三、LIC技術(shù)

    Ligation-Independent cloning,簡(jiǎn)稱LIC。采用LIC方法的pET載體是線性化的,在末端有12-15個(gè)突出的堿基以在退火時(shí)和目的片斷互補(bǔ)。在設(shè)計(jì)PCR擴(kuò)增引物時(shí)加入與LIC載體互補(bǔ)的序列,PCR產(chǎn)物用3’→5’的內(nèi)切酶消化出單鏈與載體互補(bǔ)的序列。通過這種方式就可以把目的片斷定向、高效地插入LIC載體上。一般的pET載體是先在不含DE3片段的菌株中進(jìn)行克隆篩選,之后再把陽(yáng)性克隆轉(zhuǎn)化進(jìn)入表達(dá)菌株,如BL21(DE3)中,通過IPTG誘導(dǎo)進(jìn)行表達(dá)。

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